Hacia el cultivo del boleto bayo, Imleria badia: formación de primordios, síntesis micorrícica y distribución geográfica
Resumen
Objetivo del estudio: Este trabajo representa los primeros avances hacia el cultivo del hongo ectomicorrícico de interés gastronómico conocido como boleto bayo (Imleria badia (Fr.) Vizzini (2014)). El cultivo de especies ectomicorrícicas en asociación con sus árboles hospedadores constituye un sistema de micofo-restación en el cual la producción alimentaria y la silvicultura pueden coexistir en una misma superficie. Se presentan resultados preliminares sobre la síntesis de micorrizas de I. badia, complementados con un análisis de la distribución y la tolerancia climática de la especie.
Área de estudio: El componente de desarrollo micorrícico del estudio se lleva a cabo en instalaciones de laboratorio e invernadero en Escocia, Reino Unido. El segundo componente, de análisis biogeográfico, abarca toda Europa.
Material y métodos: Se recolectaron fructificaciones de I. badia en bosques de Escocia (Reino Unido), que fueron aisladas en medios de cultivo a base de agar en el laboratorio. La síntesis micorrícica se realizó utilizando como especie hospedadora a Pinus sylvestris L. bajo condiciones de invernadero. Se realizó también un análisis biogeográfico empleando registros de distribución global procedentes del Global Biodiversity Information Facility (GBIF).
Resultados principales: Una de las cepas aisladas mostró la característica inusual de formar primordios en cultivo puro. La síntesis micorrícica se produjo con la aplicación de basidiosporas, micelio o una combinación de ambos métodos de inoculación, y la identificación fue confirmada mediante PCR. El análisis biogeográfico evidenció una amplia distribución de la especie en toda Europa, con patrones regionales definidos en la estacionalidad de la fructificación.
Aspectos destacados de la investigación: La síntesis micorrícica exitosa en condiciones de invernadero de esta especie de alto valor gastronómico constituye un avance significativo hacia su cultivo. La capacidad de generar primordios en cultivo puro refuerza su potencial de domesticación, mientras que el análisis biogeográfico proporciona información clave para la selección de sitios de ensayo en campo, como etapa subsiguiente hacia la meta del cultivo controlado.
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Citas
Agerer R, 1991. Characterization of Ectomycorrhiza, in: Methods in Microbiology. Elsevier. pp. 25–73. https://doi.org/10.1016/S0580-9517(08)70172-7
Agerer R, Rambold G, 2004–2025. DEEMY – An Information System for Characterization and Determination of Ectomycorrhizae. http://www.deemy.de [first posted on 2004-06-01; most recent update: 2011-01-10].
Barou V, Rincón A, Parladé J, 2024. Modelling environmental drivers of Tuber melanosporum extraradical mycelium in productive holm oak plantations and forests. Forest Ecology and Management 563. https://doi.org/10.1016/j.foreco.2024.121988
De La Bastide PY, Kropp BR, Piché Y, 1995. Mechanisms for the Development of Genetically Variable Mycorrhizal Mycelia in the Ectomycorrhizal Fungus Laccaria bicolor. Applied and Environmental Microbiology. https://doi.org/10.1128/aem.61.10.3609-3616.1995
Debaud JC, Gay G, 1987. In vitro fruiting under controlled conditions of the ectomycorrhizal fungus Hebeloma cylindrosporum associated with Pinus pinaster. New Phytologist 105. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1987.tb00880.x
Díaz G, Flores R, Honrubia M, 2009. Descripción de cultivos miceliares de Boletales neotropicales y europeos (Boletus grupo edulis, Boletellus y Suillus) y formación de primordios de B. edulis en cultivo puro. Revista Mexicana de Micología 30.
Duñabeitia MK, Hormilla S, Salcedo I, Peña JI, 1996. Ectomycorrhizae synthesized between Pinus radiata and eight fungi associated with Pinus spp. Mycologia 88. https://doi.org/10.2307/3761052
Dunnington D, Thorne B, 2020. ggspatial: Spatial Data Framework for ggplot2. R package version 1.
Dyshko V, Hilszczańska D, Davydenko K, Matić S, Moser WK, Borowik P, Oszako T, 2024. An Overview of Mycorrhiza in Pines: Research, Species, and Applications. Plants. https://doi.org/10.3390/plants13040506
García-Montero LG, Monleón VJ, Valverde-Asenjo I, Menta C, Kuyper TW, 2024. Niche construction by two ectomycorrhizal truffle species (Tuber aestivum and T. melanosporum). Soil Biology and Biochemistry 189. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2023.109276
Guerin-Laguette A, 2021. Successes and challenges in the sustainable cultivation of edible mycorrhizal fungi – furthering the dream. Mycoscience. https://doi.org/10.47371/MYCOSCI.2020.11.007
Hung LL, Trappe JM, 1983. Growth variation between and within species of ectomycorrhizal fungi in response to pH in vitro. Mycologia 75. https://doi.org/10.1080/00275514.1983.12021660
Jaworska G, Pogoń K, Skrzypczak A, Bernaś E, 2015. Composition and antioxidant properties of wild mushrooms Boletus edulis and Xerocomus badius prepared for consumption. Journal of Food Science and Technology 52. https://doi.org/10.1007/s13197-015-1933-x
Kotowski MA, Molnár Z, Łuczaj Ł, 2021. Fungal ethnoecology: observed habitat preferences and the perception of changes in fungal abundance by mushroom collectors in Poland. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine 17. https://doi.org/10.1186/s13002-021-00456-x
Kottke I, Qian XM, Pritsch K, Haug I, Oberwinkler F, 1998. Xerocomus badius–Picea abies, an ectomycorrhiza of high activity and element storage capacity in acidic soil. Mycorrhiza 5. https://doi.org/10.1007/s005720050191
Laessøe T, Petersen JH, 2019. Fungi of temperate Europe. Princeton University Press, Princeton.
Lofgren L, Nguyen NH, Kennedy PG, Pérez-Pazos E, Fletcher J, Liao HL, Wang H, Zhang K, Ruytinx J, Smith AH, et al., 2024. Suillus: an emerging model for the study of ectomycorrhizal ecology and evolution. New Phytologist 242. https://doi.org/10.1111/nph.19700
Malinowska E, Szefer P, Falandysz J, 2004. Metals bioaccumulation by bay bolete, Xerocomus badius, from selected sites in Poland. Food Chemistry 84. https://doi.org/10.1016/S0308-8146(03)00250-4
McLaughlin DJ, 1970. Environmental Control of Fruitbody Development in Boletus rubinellus in Axenic Culture. Mycologia 62. https://doi.org/10.1080/00275514.1970.12018970
McLaughlin DJ, 1974. Fruitbody Formation by Tylopilus felleus in Axenic Culture. Mycologia 66. https://doi.org/10.1080/00275514.1974.12019594
Mediavilla O, Olaizola J, Santos-Del-Blanco L, Oria-De-Rueda JA, Martín-Pinto P, 2016. Mycorrhization between Cistus ladanifer L. and Boletus edulis Bull is enhanced by the mycorrhiza helper bacteria Pseudomonas fluorescens Migula. Mycorrhiza 26. https://doi.org/10.1007/s00572-015-0657-0
Morte A, Gutiérrez A, Ródenas AN, 2020. Advances in desert truffle mycorrhization and cultivation. Mushrooms, Humans and Nature in a Changing World: Perspectives from Ecological, Agricultural and Social Sciences, pp. 205–219. https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8_7
Muszyńska B, Kała K, Lazur J, Włodarczyk A, 2020. Imleria badia culinary-medicinal mushroom with interesting biological properties. Food Bioscience. https://doi.org/10.1016/j.fbio.2020.100663
Nguyen NH, Hynson NA, Bruns TD, 2012. Stayin’ alive: Survival of mycorrhizal fungal propagules from 6-yr-old forest soil. Fungal Ecology 5. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2012.05.006
Ohta A, 1994. Production of fruit-bodies of a mycorrhizal fungus, Lyophyllum shimeji, in pure culture. Mycoscience. https://doi.org/10.1007/BF02318492
Pantidou ME, 1964. Cultural studies of Boletaceae: carpophores of Xerocomus badius and Xerocomus illudens in culture. Canadian Journal of Botany 42. https://doi.org/10.1139/b64-109
Pebesma E, 2018. Simple features for R: standardized support for spatial vector data. https://doi.org/10.32614/RJ-2018-009
Peintner U, Schwarz S, Mešić A, Moreau PA, Moreno G, Saviuc P, 2013. Mycophilic or Mycophobic? Legislation and Guidelines on Wild Mushroom Commerce Reveal Different Consumption Behaviour in European Countries. PLoS One 8. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0063926
Pérez-Moreno J, Guerin-Laguette A, Rinaldi AC, Yu F, Verbeken A, Hernández-Santiago F, Martínez-Reyes M, 2021. Edible mycorrhizal fungi of the world: What is their role in forest sustainability, food security, biocultural conservation and climate change? Plants, People, Planet. https://doi.org/10.1002/ppp3.10199
Smith SE, Read D, 2010. Mycorrhizal symbiosis. Academic Press.
South A, 2017. rnaturalearth: world map data from natural earth. R package version 0.1.0.
Thomas PW, 2021. Ectomycorrhiza resilience and recovery to extreme flood events in Tuber aestivum and Quercus robur. Mycorrhiza 31. https://doi.org/10.1007/s00572-021-01035-4
Thomas P, Büntgen U, 2019. A risk assessment of Europe’s black truffle sector under predicted climate change. Science of the Total Environment 655. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.11.252
Thomas PW, Vazquez LB, 2022. A novel approach to combine food production with carbon sequestration, biodiversity and conservation goals. Science of the Total Environment. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.151301
Thomas PW, Jump AS, 2023. Edible fungi crops through mycoforestry, potential for carbon negative food production and mitigation of food and forestry conflicts. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 120. https://doi.org/10.1073/pnas.2220079120
Vizzini A, 2014. Imleria Vizzini, gen. nov. Index Fungorum.
Wickham H, 2011. ggplot2. Wiley Interdisciplinary Reviews: Computational Statistics 3, 180–185. https://doi.org/10.1002/wics.147
Yamada A, 2022. Cultivation studies of edible ectomycorrhizal mushrooms: successful establishment of ectomycorrhizal associations in vitro and efficient production of fruiting bodies. Mycoscience. https://doi.org/10.47371/mycosci.2022.08.004
Yamada A, Ogura T, Ohmasa M, 2001. Cultivation of mushrooms of edible ectomycorrhizal fungi associated with Pinus densiflora by in vitro mycorrhizal synthesis: I. Primordium and basidiocarp formation in open-pot culture. Mycorrhiza 11. https://doi.org/10.1007/s005720000092
Ye J, Coulouris G, Zaretskaya I, Cutcutache I, Rozen S, Madden TL, 2012. Primer-BLAST: A tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction. https://doi.org/10.1186/1471-2105-13-134
Zhu XT, Li YC, Wu G, Feng B, Zhao K, Gelardi M, Kost GW, 2014. The genus Imleria (Boletaceae) in East Asia. Phytotaxa 191, 81–98. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.191.1.5
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